Ingénieur d'étude modèles animaux & neuroinflammation SEP - H/F

Inserm France; Lille; Sur place; EUR 35 000 - 45 000; Plein temps

Résumé du poste

Un institut de recherche national recrute un·e ingénieur·e d'étude pour participer à un projet sur la sclérose en plaques à Lille. Ce poste nécessite des compétences en neuroimmunologie, en biologie moléculaire et en expérimentation animale. Le candidat devra gérer des modèles animaux et former des étudiants. Le travail se déroule dans un environnement de laboratoire exigeant avec des horaires potentiellement décalés.

Qualifications

• Solides connaissances en (neuro)immunologie et inflammation.
• Maîtrise des techniques d'expérimentation animale et de biologie cellulaire.
• Capacité à travailler dans un environnement de laboratoire.

Responsabilités

• Gérer l'analyse de modèles animaux.
• Développer des protocoles expérimentaux.
• Former les étudiants en stage.

Connaissances

Connaissances en neuroimmunologie

Compétences en biologie moléculaire

Capacité d'analyse statistique

Anglais scientifique

Formation

Diplôme en biologie ou domaine connexe

Outils

Cytométrie de flux

Microscopie confocale

Logiciel (Word, Excel, PowerPoint)

Description du poste

Mission principale :

Le groupe de Neuroimmunologie recrute un·e ingénieur·e d’étude, motivé·e et proactif·ve, pour participer à un projet de recherche translationnelle mené par le Dr Lennart Mars, au sein du Pôle Recherche (CHU de Lille). Ce projet est consacré à l’étude d’une nouvelle sous-population de cellules B inflammatoires impliquées dans la sclérose en plaques (SEP).

À partir d’une cohorte de patients non traités en phase précoce, de coupes de cerveau post-mortem et de modèles murins dédiés, l’étude vise à déterminer la localisation, le phénotype et la prédominance de ces cellules B dans divers compartiments cérébraux. Elle s’intéresse également à leurs interactions avec les cellules T et la microglie, chez l’humain et dans des modèles murins de transfert adoptif de lymphocytes B.

Le projet mobilise des approches technologiques de pointe, incluant la cytométrie de flux spectrale, la transcriptomique traditionnelle et spatiale, et l’imagerie de fluorescence spectrale. Il est développé en collaboration avec la clinique SEP du CHU de Lille et l’équipe du Dr Jan Bauer au Centre de recherche sur le cerveau de Vienne (Autriche).

L’ingénieur·e jouera un rôle de référent·e technique dans l’équipe, en particulier pour l’analyse de modèles animaux rongeurs. Il·elle maîtrisera les techniques d’expérimentation animale, de culture cellulaire, de cytométrie en flux et de biologie moléculaire. Il elle sera en charge de la gestion des colonies murines et assurera la transmission des savoir-faire techniques auprès des membres du laboratoire.

Activités principales :

• Générer, valider et interpréter des résultats expérimentaux dans le cadre des projets de recherche.
• Assurer un rôle de référent·e technique au sein de l’équipe pour l’analyse de modèles animaux rongeurs.
• Appliquer, optimiser et rédiger des protocoles expérimentaux, tout en transmettant les savoir-faire techniques associés.
• Analyser les données expérimentales et les présenter au responsable de projet, ainsi que lors des réunions d’équipe.
• Gérer les stocks, passer les commandes et assurer l’achat du petit matériel nécessaire aux activités du laboratoire.
• Former les étudiants aux méthodologies mises en œuvre, et encadrer les stages de Master 1 et 2.
• Participer à la diffusion et à la valorisation des résultats scientifiques, notamment dans le cadre de publications, appels à projets et communications orales ou affichées.
• Assurer une communication active et la gestion des relations avec les interlocuteurs internes et externes (collaborateurs, plateformes, services techniques, etc.).

Spécificité(s) et environnement du poste :

• Les missions se déroulent dans le bâtiment Pole recherche au CHU Lille.
• Travail expérimental en milieu confiné (Animalerie A2).
• Travail en horaire décalé, voire le week-end, rare mais néanmoins possible.

Profil recherché

Connaissances :

• Solides connaissances théoriques et pratiques en (neuro)immunologie, inflammation et neurobiologie.
• Maîtrise des techniques générales de biologie, ainsi que des méthodes spécifiques à l’immunologie expérimentale.
• Capacité à garantir la qualité et la pertinence des outils d’analyse et des résultats scientifiques produits.
• Aptitude à concevoir, planifier et conduire les différentes phases d’un projet de recherche.
• Maîtrise des techniques couramment utilisées en immunologie : expérimentation animale, biologie cellulaire (culture cellulaire, cytométrie en flux, microscopie), biologie moléculaire (transcriptomique en vrac et unicellulaire, RT-PCR quantitative).
• Bonne connaissance des règles d’hygiène et de sécurité applicables à la manipulation des rongeurs et des organismes génétiquement modifiés (OGM).
• Connaissance des normes de sécurité en laboratoire conventionnel et en environnement de niveau L2.
• Compétences de base en statistiques appliquées : tests du Chi², analyses discriminantes, arbres décisionnels.
• Aisance dans l’utilisation des outils informatiques pour le traitement des données, le pilotage des équipements scientifiques, la mise en forme de présentations écrites ou orales (Word, Excel, PowerPoint, Prism).
• Capacité à assurer une veille bibliographique sur les technologies et méthodologies utilisées au laboratoire.
• Bonne maîtrise de l’anglais scientifique, notamment pour la compréhension des protocoles, des articles et la rédaction technique.

Savoir-faire :

• Mettre en œuvre, dans le cadre d’un programme expérimental, un ensemble de techniques de biologie appliquées à l’étude de l’inflammation.
• Réaliser des expérimentations animales (niveau FELASA C) et assurer le suivi clinique de modèles murins expérimentaux.
• Maîtriser les techniques d’injection intraveineuse, intrapéritonéale et sous-cutanée chez la souris.
• Effectuer des prélèvements d’organes : cerveau, intestin, moelle épinière, moelle osseuse, organes lymphoïdes secondaires.
• Analyser les réponses immunitaires in vivo et ex vivo : culture de lignées cellulaires et de cellules primaires, tests de présentation antigénique.
• Utiliser la cytométrie de flux : immunomarquage (anticorps primaires, secondaires, intracellulaires), acquisition et tri cellulaire.
• Réaliser des tests fonctionnels : prolifération, Elispot, dosage de cytokines.
• Pratiquer les techniques de biologie moléculaire de base : extraction d’ADN et d’ARN, PCR, PCR quantitative, Western blot.
• Préparer des échantillons pour l’histologie : coupes en paraffine et en congélation.
• Réaliser des analyses en biochimie : purification d’anticorps, dosage ELISA.
• Utiliser des techniques d’imagerie cellulaire, notamment la microscopie confocale et l’immunofluorescence standard.
• Tenir à jour un cahier de laboratoire électronique, de manière rigoureuse et conforme aux normes de traçabilité.
• Organiser son travail de manière autonome, tout en collaborant efficacement avec les autres membres de l’équipe.